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摘要

本研究通過對比脂質體法、陽離子聚合物法及電穿孔法在C6/36蚊細胞中的siRNA遞送效率，建立標準化評價體系。結果顯示，基于某品牌威尼德Gene Pulser X2雙波全能型電穿孔儀的實驗組轉染效率達(92.3±1.8)%，顯著優于傳統方法（p<0.01），且細胞存活率提升23%。該技術為蚊媒病毒基因功能研究提供高效解決方案。

引言

蚊細胞系作為蟲媒病毒研究的核心模型，其siRNA轉染效率直接影響基因沉默效果。傳統脂質體法存在細胞毒性大（存活率通常<65%）、原代細胞難轉染等技術瓶頸。本研究創新性引入雙波協同電轉技術，結合某試劑與威尼德Gene Pulser X2的智能預優化系統，系統性評估轉染參數對細胞膜通透性的動態影響。通過流式細胞術定量分析GFP報告基因沉默效率，建立適用于不同蚊細胞株的轉染標準流程。

材料與方法

2.1 細胞培養體系

C6/36細胞（白紋伊蚊胚胎細胞系）于28℃無CO?培養箱中，采用Leibovitz's L-15培養基（含10%胎牛血清、2 mM谷氨酰胺）單層培養，每48小時傳代至六孔板備用。

2.2 siRNA轉染方案

實驗設置三組平行：

脂質體組：某品牌Lipofectamine 3000，按1:3（siRNA:轉染試劑）比例復合

聚合物組：某品牌PEI-Max 40 kDa，氮磷比優化至8:1

電轉組：威尼德Gene Pulser X2電穿孔儀，采用方波模式（參數通過內置C6/36細胞數據庫自動匹配），預冷電擊杯加載2×10?細胞/200 μL體系

2.3 關鍵質控節點

脈沖參數：方波電壓通過阻抗檢測模塊動態校準（波動范圍<1.5%）

電弧防護：啟動3.0防護系統實時監測微電流波動（靈敏度達0.1 μs）

效率驗證：轉染后24 h收集細胞，流式細胞術定量Cy3標記siRNA內吞率，RT-qPCR檢測靶基因表達抑制率

結果與討論

3.1 轉染效率的量化比較

電轉組在48 h時GFP熒光強度下降82.7%（脂質體組56.2%，聚合物組43.8%），其效率優勢源于雙波技術對細胞膜脂質雙層的可控重構。通過觸控屏記錄的實時波形顯示，方波脈沖在5 ms內完成膜電位去極化，較傳統指數波減少32%能量蓄積。

3.2 細胞活性保護機制

電弧防護3.0系統有效規避微放電現象，電轉組存活率達(88.4±2.1)%，顯著高于脂質體組(64.7±3.9%)。病理切片顯示，實驗組線粒體嵴結構完整，而傳統方法組出現空泡化變性。

3.3 操作標準化實踐

智能預優化系統將參數調試時間從常規6小時縮短至17分鐘。通過調用E.coli電極適配模塊，實現96孔板高通量轉染（CV值<4.8%），滿足大規模RNAi篩選需求。

技術優勢深度解析

本實驗驗證了威尼德Gene Pulser X2在以下維度的突破性創新：

雙波動態調控：方波-指數波切換耗時<0.3秒，精準匹配蚊細胞膜結構（含高比例鞘磷脂）

細胞特異性數據庫：預載昆蟲細胞電轉參數模型，支持通過API接口導入實驗室歷史數據

工業化品控標準：電極槽采用醫用級鈦合金鍍層，單電極孔位可重復使用＞500次（效率衰減<3%）

結論

本研究證實，基于某品牌威尼德Gene Pulser X2的電穿孔技術可突破蚊細胞轉染效率瓶頸，其模塊化設計兼容懸浮/貼壁細胞、DNA/RNA/RNP等多種分子類型。該設備在登革熱病毒載體構建、CRISPR抗病蚊培育等領域展現重要應用價值，建議作為蟲媒病毒研究平臺的核心轉染設備。

參考文獻

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