引言

隨著生物制藥技術的迅猛發展，抗體-藥物偶聯物（ADC）作為一種高效且有針對性的藥物類型，正逐步在腫瘤治療中展現出其優勢。ADC藥物的療效在很大程度上取決于其內化效率，即抗體能否有效地被靶細胞內化并釋放藥物。在這一背景下，DT3C重組蛋白作為評價抗體內化效率的重要工具，正受到越來越多研究者的關注。

ADC內化效率檢測原理

DT3C（Diphtheria Toxin Fragment A and Streptococcus Protein G C1, C2, C3）是一種重組表達的融合蛋白，由白喉毒素的Fragment A（僅毒素部分）和G群鏈球菌的3C片段（IgG結合部分）融合而成。該蛋白能夠與抗體的Fc端高度親和，與抗體結合的DT3C分子在抗體被內吞時一同進入細胞。DT3C可以與任何IgG型抗體結合，因此可用于檢測來自不同物種的抗體內化效率。DT3C與抗體結合后形成的mAb-DT3C偶聯物在體外模擬ADC藥物的作用機制，有助于在藥物研發早期階段評估抗體的內化能力和藥物的釋放效率。

(a) DT3C由催化(Cat)、轉位(T)和Fc結合(3C)結構域組成。DT3C的Fc結合結構域特異性地與抗體結合。

(b) mAb-DT3C偶聯復合物識別并結合細胞表面抗原后，mAb-DT3C-抗原復合物被內化。，其中DT3C的轉位末端被細胞弗林蛋白酶切割，DT3C的催化結構域被釋放到細胞質中，DT3C釋放出具有毒性的DT，DT能夠抑制EF2-ADP核糖基化的活性，阻斷蛋白翻譯過程，最終導致細胞死亡。

未進入細胞的DT3C則不具有殺傷細胞的活性，因此可根據細胞殺傷情況來評價抗體的內化效率。

檢測步驟

01 制備mAb-DT3C偶聯物

將DT3C蛋白和目的抗體在室溫下孵育30分鐘，形成mAb-DT3C共軛物。

02 共培養

將mAb-DT3C偶聯物直接加到含有抗原陽性細胞（如腫瘤細胞）的培養基中進行孵育。

03 檢測內化效率

通過流式細胞術或熒光顯微鏡等方法，檢測細胞活力或細胞死亡情況，從而評估抗體在細胞表面的內化效率。

DT3C檢測ADC藥物抗體內化效率優勢

廣泛適用性：可與來自不同物種（如人、小鼠、兔、山羊）的任何IgG結合。

高效性：在室溫下孵育30分鐘即可形成mAb-DT3C偶聯物。DT3C在細胞內能夠迅速釋放出具有毒性的DT，從而快速評估抗體的內化效率。

內化效率高：分子量小于Mab-ZAP，mAb-DT3C內化效率高于mAb-Mab-ZAP。

便捷性：通過流式細胞術或熒光顯微鏡等方法，即可快速、準確地檢測mAb在細胞表面的內化效率。

注意事項：在進行體外檢測時，應確保實驗條件的一致性，如細胞種類、細胞濃度、DT3C和抗體的比例、孵育時間等。需要嚴格控制實驗過程中的無菌操作，以避免外界因素的干擾。

展望

隨著生物制藥技術的不斷發展，ADC藥物在腫瘤治療中的應用前景日益廣闊。然而，ADC藥物的療效受多種因素影響，其中抗體的內化效率是關鍵因素之一。因此，對抗體內化效率的準確評估對于ADC藥物的研發具有重要意義。DT3C重組蛋白作為一種高效、簡便、廣泛適用的評價工具，將在ADC藥物研發中發揮越來越重要的作用。未來，隨著DT3C技術的不斷完善和應用領域的拓展，相信將為ADC藥物的研發提供更多有力的支持。

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