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磷酸化Q&A

時間:2025/5/20閱讀:49
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磷酸化Q&A


Q1: 如何選擇磷酸化位點檢測的最佳方法?

A1: 常規檢測推薦Western blot(WB),適用于已知位點的快速驗證。若需高通量檢測或未知位點鑒定,質譜法(如TiO2富集結合LC-MS/MS)是shǒu xuǎn,其靈敏度可覆蓋低豐度磷酸化蛋白。酪氨酸磷酸化建議使用特異性抗體富集技術,避免傳統IMAC法的低特異性問題。


Q2: 如何預測磷酸化位點的上游激酶?

A2: 可以使用生物信息學工具(例如 PhosphoSitePlus 或激酶-底物富集分析 (KSEA))預測上游激酶,這些工具可以分析已知的激酶-底物基序和信號傳導網絡。為了驗證預測結果,通常使用體外激酶測定或免疫共沉淀 (Co-IP) 后進行質譜分析等實驗方法來確認激酶-底物相互作用。


Q3: 磷酸化蛋白WB出現非特異性條帶如何解決?

A3: 關鍵步驟包括:①使用BSA而非牛奶封閉;②加入蛋白酶/磷酸酶抑制劑;③設置總蛋白內參(如Akt總蛋白)及體系內參(如GAPDH)。


Q4: 磷酸化修飾是否穩定?樣品應如何保存以避免去磷酸化?

A4: 磷酸化修飾在體外環境下相對不穩定,尤其容易被內源性磷酸酶去磷酸化。建議:

●  樣品裂解時加入廣譜磷酸酶抑制劑(如NaF);

●  處理后的蛋白或肽段應置于-80℃保存,避免反復凍融;

●  富集后的磷酸化肽建議盡快上機分析,長期保存前可進行凍干處理。


Q5: 磷酸化蛋白質是否一定功能活性發生變化?

A5: 不一定。盡管磷酸化是細胞信號轉導中重要的調控機制,但并非所有磷酸化事件都會引起蛋白功能的改變。磷酸化可以激活或抑制酶活性、調控蛋白-蛋白相互作用、改變亞細胞定位,或通過與泛素化等其他翻譯后修飾的串擾影響蛋白穩定性。然而,某些磷酸化位點可能并不具有直接功能,僅作為“旁觀者"修飾存在。一個磷酸化事件是否具有功能意義,主要取決于其修飾殘基的具體位置及其結構背景,并需通過生物學實驗加以驗證。


Q6: 能否只分析酪氨酸(Tyr)磷酸化,不考慮Ser/Thr?

A6: 可以。由于Tyr磷酸化在細胞中豐度極低且特異性強,常規的TiO?或IMAC富集方法對其不具備足夠的選擇性,因此建議采用磷酸化酪氨酸抗體進行免疫沉淀(IP)富集。選擇高親和力和高特異性的p-Tyr抗體對于實驗成功至關重要,同時建議準備較多的起始樣本量,以獲得足夠的信號用于后續質譜分析。


Q7: 如何提高磷酸化肽段的檢出率?

A7: 提高檢出率需關注以下兩點:

●  蛋白覆蓋度:覆蓋度越高,越有可能檢測到磷酸化位點。

●  磷酸化比例:位點磷酸化比例越高,檢出概率越大。

此外,建議使用溫和裂解條件并添加磷酸酶抑制劑(如NaF)以防止磷酸化位點丟失。


Q8: 不同的磷酸肽富集方法有哪些優缺點?

A8: 不同的磷酸肽富集方法各有優勢和適用場景,常見的方法主要包括金屬氧化物親和層析(TiO?)、金屬離子親和層析(IMAC)和免疫親和富集(IP)。TiO?富集法具有操作簡便、重復性好、對Ser/Thr磷酸化肽段親和力強等優點,廣泛應用于大規模磷酸化組學研究,但對Tyr磷酸化的識別效率較低,且可能共富集帶有酸性氨基酸的非磷酸化肽。IMAC方法通過Fe3?、Ga3?等離子與磷酸基團作用進行選擇性結合,選擇性與TiO?相似,但在某些體系下背景較高,需優化洗脫緩沖體系以提高特異性。免疫親和富集使用針對磷酸化位點(尤其是p-Tyr)的特異性抗體進行識別,是研究低豐度修飾或特定通路蛋白的有效手段,具有高度特異性,但成本較高,對抗體質量依賴性強,且不適用于大規模無偏分析。因此,磷酸肽富集方法應根據實驗目的、樣本類型及目標位點選擇,必要時也可聯合多種策略提高覆蓋率和特異性。


Q9: 磷酸化蛋白的WB實驗中,如何減少背景噪音?

A9: 減少背景噪音的方法包括:

●  選擇合適的封閉劑(如BSA)。

●  優化抗體濃度和孵育時間。

●  增加洗膜次數和時間。

●  使用高質量的抗體和檢測試劑。

這些措施有助于提高信噪比,獲得清晰的條帶。


Q10: 如何通過實驗驗證潛在的磷酸化位點?

A10: 潛在磷酸化位點的實驗驗證通常涉及分子和功能方法的結合。一種常見的策略是定點誘變,即用特定的絲氨酸、蘇氨酸或酪氨酸殘基(通常用丙氨酸)進行替換,以評估其在蛋白質功能中的作用。此外,還可以使用針對修飾殘基的磷酸化特異性抗體進行蛋白質印跡或免疫沉淀實驗,以檢測生理條件下預測位點的磷酸化情況。為了進一步驗證功能意義,可以使用細胞或生化分析來評估磷酸化或突變后蛋白質活性、定位或結合相互作用的變化。與精選的磷酸化數據庫和先前報道的研究進行交叉引用,也可以提供背景信息,并支持該位點的生物學相關性。


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