Q1: 蛋白質(zhì)糖基化分析的常用方法有哪些？

A1: 核心方法包括：

1、色譜分析（Chromatography）

色譜法可根據(jù)糖鏈或糖蛋白的理化特性進(jìn)行有效分離。在糖基化分析中，常用的液相色譜技術(shù)（如HILIC、陰離子交換色譜）可用于分離不同糖型結(jié)構(gòu)，或?qū)⑻堑鞍讖膹?fù)雜樣品中分離出來(lái)，適合進(jìn)行糖鏈圖譜構(gòu)建和差異比較分析。

2、凝集素結(jié)合分析（Lectin Binding Assays）

凝集素是一類能結(jié)合特定碳水化合物結(jié)構(gòu)的蛋白。利用不同凝集素的選擇性結(jié)合能力，可對(duì)特定類型的糖鏈（如唾液酸、半乳糖、甘露糖等）進(jìn)行識(shí)別。這類方法適用于檢測(cè)糖基化修飾的存在與變化，常用于初篩分析或條件比較實(shí)驗(yàn)。

3、酶學(xué)分析（Enzymatic Assays）

通過(guò)使用特異性糖苷酶（如PNGase F、O-glycosidase），可以去除或切割特定類型的糖鏈，從而判斷糖鏈類型、定位糖基化位點(diǎn)，或研究其對(duì)蛋白功能的影響。

4、糖鏈標(biāo)記（Glycan Labeling）

采用熒光或化學(xué)標(biāo)記方法對(duì)糖鏈進(jìn)行標(biāo)記，可提高檢測(cè)靈敏度并實(shí)現(xiàn)可視化追蹤。標(biāo)記后的糖鏈可用于定量分析、顯微成像或流式檢測(cè)，是研究糖鏈分布和豐度變化的有效工具。

Q2: 如何區(qū)分N-糖基化和O-糖基化？

A2: N-糖基化和O-糖基化的區(qū)分主要基于修飾位點(diǎn)、糖鏈結(jié)構(gòu)、修飾時(shí)機(jī)及其功能差異。

首先，兩者附著的氨基酸殘基不同。N-糖基化發(fā)生在天冬酰胺（Asn）殘基上，且通常出現(xiàn)在Asn-X-Ser/Thr的特定位點(diǎn)序列中（X不能為脯氨酸）；而O-糖基化則修飾絲氨酸（Ser）或蘇氨酸（Thr）殘基，不依賴特定序列。

其次，糖鏈的核心結(jié)構(gòu)顯著不同。N-糖鏈擁有一個(gè)保守的高甘露糖型核心（Man?GlcNAc?），而O-糖鏈則展現(xiàn)出更豐富的結(jié)構(gòu)多樣性，例如core 1、core 2、core 3等。

此外，修飾時(shí)機(jī)也不同。N-糖基化在蛋白質(zhì)翻譯過(guò)程中進(jìn)行（共翻譯修飾），有助于蛋白折疊與轉(zhuǎn)運(yùn)；O-糖基化則是在蛋白質(zhì)合成和初步折疊完成后進(jìn)行（翻譯后修飾），多用于調(diào)控細(xì)胞間識(shí)別和黏附。

最后，兩者在生物學(xué)功能上也有區(qū)分。N-糖基化更傾向于參與蛋白穩(wěn)定性維持和胞內(nèi)運(yùn)輸，而O-糖基化則在免疫應(yīng)答、細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)及分化調(diào)控中發(fā)揮重要作用。

通過(guò)這些方面的綜合判斷，可有效區(qū)分N-糖基化與O-糖基化。

Q3: 蛋白質(zhì)糖基化分析前，是否需要對(duì)樣本進(jìn)行脫糖處理？

A3: 是否進(jìn)行脫糖處理需依據(jù)分析目的和糖基化類型而定，不能一概而論。

若研究目標(biāo)是解析糖鏈結(jié)構(gòu)或定位糖基化位點(diǎn)，則應(yīng)保留糖鏈進(jìn)行分析。此時(shí)通常配合糖肽富集策略和高分辨質(zhì)譜技術(shù)，以zuì dà chéng dù保留原始修飾信息，避免因脫糖導(dǎo)致位點(diǎn)信息丟失。

若目的是提高非修飾肽段的檢出率、簡(jiǎn)化譜圖背景，或進(jìn)行總蛋白/肽段定量，則可選擇性進(jìn)行脫糖處理，以降低糖鏈對(duì)電離效率、保留時(shí)間和碎裂模式的干擾，提升數(shù)據(jù)解析質(zhì)量。

需要注意的是，不同脫糖酶（如PNGase F、Endo H、O-glycosidase等）具有特定底物特異性，它們只能去除某些類型的糖鏈。例如，PNGase F能高效去除大多數(shù)N-糖，但不適用于O-糖或某些修飾封閉的結(jié)構(gòu)。因此，酶的選擇應(yīng)根據(jù)目標(biāo)蛋白的具體糖型特征合理設(shè)定，以確保脫糖的準(zhǔn)確性和有效性。

Q4: 進(jìn)行糖基化分析時(shí)，蛋白樣本需要去鹽脫脂嗎？

A4: 需要。高鹽和脂類雜質(zhì)會(huì)嚴(yán)重干擾LC-MS/MS分析，建議用濾膜離心或C18固相萃取進(jìn)行脫鹽處理，確保樣品清潔度。

Q5: 蛋白糖基化分析的主要干擾因素有哪些？

A5: 包括非糖修飾共存（如磷酸化、乙酰化）、鹽離子干擾、樣品降解、非特異結(jié)合及質(zhì)譜背景噪音等。

Q6: 蛋白質(zhì)糖基化后分子量增加多少?

A6：蛋白質(zhì)糖基化后分子量的增加取決于糖鏈的類型和長(zhǎng)度。

●  N-糖基化：通常增加約 1.2–3 kDa，復(fù)雜型或高度分支結(jié)構(gòu)可超過(guò) 5 kDa。

●  O-糖基化：?jiǎn)蝹€(gè)核心結(jié)構(gòu)如core 1約增加 365 Da，多糖鏈聚合時(shí)可累計(jì)達(dá)數(shù)千道爾頓。

需要注意的是，實(shí)際分子量增幅具有多樣性，需結(jié)合具體糖型和位點(diǎn)數(shù)，通過(guò)質(zhì)譜精確測(cè)定。

Q7: 蛋白質(zhì)糖基化分析為什么要去糖基化？

A7: 去糖基化在蛋白質(zhì)糖基化分析中主要用于消除糖鏈對(duì)蛋白主鏈結(jié)構(gòu)解析的干擾，從而更清晰地分析肽段本體。這一處理有助于暴露潛在的糖基化位點(diǎn)，簡(jiǎn)化質(zhì)譜譜圖，提高蛋白序列的識(shí)別精度。同時(shí)，去除糖鏈后可避免不同糖型或連接方式帶來(lái)的異質(zhì)性干擾，使后續(xù)的結(jié)構(gòu)或功能研究更具針對(duì)性和一致性。

Q8: 如何防止糖鏈在樣品處理過(guò)程中脫落？

A8：保持中性或弱酸性pH，避免高溫和長(zhǎng)時(shí)間孵育操作，盡量在4°C下進(jìn)行處理步驟以保護(hù)糖鏈穩(wěn)定性。

Q9: 樣品中是否需去除高豐度蛋白？

A9：若使用的是血清、血漿等體液樣本，建議去除如白蛋白、免疫球蛋白等高豐度成分，以提高低豐度糖蛋白的檢測(cè)靈敏度。

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